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迈安纳学院 / 知识海洋 / 迈安纳|【文献分享】饱和哌啶基可电离脂质破解mRNA-LNP超低温储存困局

 

mRNA-LNP疗法在疾病预防、肿瘤免疫治疗与基因编辑等领域展现出广阔前景,但苛刻的超低温冷链储存要求仍是其全球放量的主要障碍。活性丧失的核心化学根源在于:可电离脂质降解产生的醛类副产物会与mRNA发生共价加合,导致翻译抑制。已有研究揭示了两条醛生成路径——可电离脂质N-氧化物(N-oxide)分解,以及脂质尾链中不饱和双键的氧化——但相应的抑制策略在长期储存场景下尚未得到充分验证。

围绕「抑醛」策略,既往研究提出:哌啶基可电离脂质可通过抑制N-oxide分解减少醛生成;采用全饱和键的脂质结构则可从源头消除氧化位点。然而,由此类脂质构建的mRNA-LNP在长期储存中「理化性质—生物活性」的关联从未被系统阐明,且既往研究在脂质种类与mRNA长度上的代表性有限,结论的普适性存疑。

针对上述空白,日本卫材(Eisai)团队于2026年在Journal of Drug Delivery Science and Technology发表了题为「Impact of physicochemical properties on the biological activity of mRNA-loaded lipid nanoparticles with piperidine-based ionizable lipids after long-term storage」的研究工作。该研究以饱和键哌啶基脂质L301为代表,对mRNA-LNP在−80、−20和5 °C三种储存条件下开展了长达12个月的系统稳定性评价,建立了理化关键质量指标与体内外生物活性之间的关联,为摆脱超低温冷链提供了实验依据。

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01

实验结果

Experimental

”

 

L301的分子设计逻辑

L301以哌啶环叔胺为可电离头部,两条烷基尾链为全饱和结构:一方面,环状叔胺结构抑制N-氧化物向醛类的分解路径;另一方面,饱和尾链消除了不饱和双键的氧化位点,从结构上阻断醛类副产物的生成。配合Tris-HCl外水相对醛的清除作用,共同保护mRNA免受共价修饰,从而维持生物活性。

 

制剂处方与稳定性评价方案

研究采用编码ACE2诱饵蛋白3N39v4(融合人IgG1 Fc,约3150 nt)的mRNA,LNP处方为L301/DSPC/胆固醇/DMG-PEG 2000(摩尔比约48.9:10.0:39.6:1.5),最终制剂为0.2 mg/mL mRNA、20 mM Tris-HCl(pH 7.5)、8%蔗糖,经无菌过滤分装后避光储存于−80、−20、5 °C,于0、1、3、6、12个月取样。

理化评价涵盖:外观、Z-average粒径与PDI(DLS)、zeta电位、pH、cryo-EM形貌、mRNA浓度(阴离子交换HPLC)、包封率(RiboGreen)、mRNA完整性(毛细管电泳)、四种脂质组分浓度(HPLC-CAD)以及L301 N-oxide杂质(LC-MS/MS多重反应监测,定量限0.2 μg/mL);生物活性则通过Hep3B细胞体外表达与小鼠静脉注射体内表达两个层面,以ELISA定量3N39v4蛋白进行评价。

Figure 1. mRNA、脂质组分及mRNA-LNP制备工艺示意图

12个月长期稳定性的关键结果

三种储存条件下12个月的关键指标对比如下:

 

物理性质:粒径与PDI呈温度依赖性增长

−80 °C下粒径(约65 nm)与PDI(约0.1)12个月内保持稳定;−20 °C下粒径缓慢增加约15 nm,PDI始终低于0.2,仍属均一体系;5 °C下则明显劣化——3个月后粒径即超过100 nm、PDI突破0.2,6个月后急剧增长并出现可见颗粒,外观由淡蓝乳光转为白色。cryo-EM显示各条件储存12个月后LNP的形态与内部结构均无显著变化,未观察到聚集或融合颗粒;pH稳定于约7.5,zeta电位维持在−5至−10 mV且无统计学差异,提示颗粒聚集源于温度诱导的膜结构应力(如冰晶形成改变脂质排布),而非表面电荷改变。

 

 

Figure 2. 三种温度储存12个月的粒径(A)与PDI(B)变化趋势

 

Figure 3. 储存前后mRNA-LNP的冷冻电镜形貌对比

 

化学性质:mRNA完整性是核心变量

mRNA浓度(0.21 mg/mL)与包封率(>97%)在全部储存条件下12个月内均保持不变;但mRNA完整性呈明显温度依赖:−80 °C基本不变,−20 °C缓慢下降、12个月仍保持70%以上(回归斜率−0.64/月),5 °C则快速降至12个月时的约42%(斜率−3.00/月)。在无菌、避光条件下,LNP内部水相中的水解被确认为mRNA降解的主要路径——即便包封率完好,mRNA的化学不稳定性依然凸显。四种脂质组分浓度均无下降趋势,处方组成保持稳定;质谱MRM监测显示,12个月后L301 N-oxide虽可检出但低于定量限(0.2 μg/mL),相对含量不足L301的0.4%,证实哌啶基饱和结构有效抑制了氧化降解路径。

 

Figure 4. mRNA浓度(A)、包封率(B)与mRNA完整性(C)的12个月变化趋势

 

Figure 5. 四种脂质组分(L301、DSPC、胆固醇、DMG-PEG 2000)浓度的12个月变化

 

Figure 6. L301氧化为N-oxide的路径及LC-MS/MS监测结果

 

体外活性:−20 °C与−80 °C基本等效

Hep3B细胞实验显示,−20 °C储存的样品体外蛋白表达在1个月后保留约80%(相对−80 °C),此后12个月内保持稳定;5 °C组则随时间持续下滑,12个月时表达下降超过80%,与粒径、PDI及mRNA完整性三项指标的恶化高度相关。

Figure 7. 不同储存条件下mRNA-LNP的Hep3B细胞体外蛋白表达评价

 

体内活性:超出预期的稳健性

将储存12个月的样品经静脉注射小鼠(1 mg/kg mRNA,24小时后ELISA定量血浆3N39v4),结果显示三种储存条件之间均无统计学差异——体内活性对理化劣化的敏感度远低于体外。作者分析认为,体内表达主要取决于「可翻译mRNA」的可用量:5 °C组仍保留约42%的完整mRNA,加之肝窦内皮细胞、Kupffer细胞及脾细胞等对粒径增大颗粒的补偿性摄取与蛋白冠效应,共同缓冲了理化变化对功能的影响。这一结果凸显了mRNA-LNP体内外活性关联的复杂性。

Figure 8. 储存12个月后mRNA-LNP的小鼠体内蛋白表达评价

02

小结

Result

”

 

综合理化与活性数据,该研究确立了Z-average粒径、PDI与mRNA完整性为与生物活性关联最紧密的三大关键质量指标。从制药工业实践角度:−20 °C可作为mRNA-LNP长达12个月的实用储存条件(与−80 °C等效),有望显著降低超低温冷链依赖;5 °C下则建议以约3个月为保守储存期限。此外,缩短mRNA链长、增强脂质疏水性以限制水分渗入颗粒内部,是进一步提升储存稳定性的潜在方向。

 

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