mRNA-LNP疗法在疾病预防、肿瘤免疫治疗与基因编辑等领域展现出广阔前景,但 苛刻的超低温冷链储存要求 仍是其全球放量的主要障碍。活性丧失的核心化学根源在于:可电离脂质降解产生的 醛类副产物会与 mRNA发生共价加合 ,导致翻译抑制。已有研究揭示了两条醛生成路径 —— 可电离脂质 N- 氧化物( N-oxide )分解,以及脂质尾链中不饱和双键的氧化 —— 但相应的抑制策略在长期储存场景下尚未得到充分验证。
围绕「抑醛」策略,既往研究提出: 哌啶基可电离脂质 可通过抑制 N-oxide分解减少醛生成;采用 全饱和键 的脂质结构则可从源头消除氧化位点。然而,由此类脂质构建的 mRNA-LNP在长期储存中「理化性质 — 生物活性」的关联从未被系统阐明,且既往研究在脂质种类与 mRNA 长度上的代表性有限,结论的普适性存疑。
针对上述空白,日本卫材( Eisai)团队于 2026 年在 Journal of Drug Delivery Science and Technology 发表了题为 「 Impact of physicochemical properties on the biological activity of mRNA-loaded lipid nanoparticles with piperidine-based ionizable lipids after long-term storage」 的研究工作。该研究以饱和键哌啶基脂质 L301 为代表,对 mRNA-LNP在 −80 、 −20 和 5 °C 三种储存条件下开展了长达 12个月 的系统稳定性评价,建立了理化关键质量指标与体内外生物活性之间的关联,为摆脱超低温冷链提供了实验依据。
L301以 哌啶环叔胺 为可电离头部,两条烷基尾链为 全饱和结构 :一方面,环状叔胺结构抑制 N-氧化物向醛类的分解路径;另一方面,饱和尾链消除了不饱和双键的氧化位点,从结构上阻断醛类副产物的生成。配合 Tris-HCl 外水相对醛的清除作用,共同保护 mRNA 免受共价修饰,从而维持生物活性。
研究采用编码 ACE2诱饵蛋白 3N39v4 (融合人 IgG1 Fc ,约 3150 nt )的 mRNA , LNP 处方为 L301/DSPC/ 胆固醇 /DMG-PEG 2000 (摩尔比约 48.9:10.0:39.6:1.5 ),最终制剂为 0.2 mg/mL mRNA 、 20 mM Tris-HCl ( pH 7.5 )、 8% 蔗糖,经无菌过滤分装后避光储存于 −80 、 −20 、 5 °C ,于 0 、 1 、 3 、 6 、 12 个月取样。
理化评价涵盖:外观、 Z-average粒径与 PDI ( DLS )、 zeta 电位、 pH 、 cryo-EM 形貌、 mRNA 浓度(阴离子交换 HPLC )、包封率( RiboGreen )、 mRNA 完整性(毛细管电泳)、四种脂质组分浓度( HPLC-CAD )以及 L301 N-oxide 杂质( LC-MS/MS 多重反应监测,定量限 0.2 μg/mL );生物活性则通过 Hep3B细胞体外表达 与 小鼠静脉注射体内表达 两个层面,以 ELISA定量 3N39v4 蛋白进行评价。
Figure 1. mRNA、脂质组分及 mRNA-LNP 制备工艺示意图
三种储存条件下 12个月的关键指标对比如下:
−80 °C 下粒径(约 65 nm)与 PDI (约 0.1 ) 12 个月内保持稳定; −20 °C 下粒径缓慢增加约 15 nm, PDI 始终低于 0.2 ,仍属均一体系; 5 °C 下则明显劣化 ——3 个月后粒径即超过 100 nm 、 PDI 突破 0.2 , 6 个月后急剧增长并出现可见颗粒,外观由淡蓝乳光转为白色。 cryo-EM 显示各条件储存 12 个月后 LNP 的形态与内部结构均无显著变化,未观察到聚集或融合颗粒; pH 稳定于约 7.5 , zeta 电位维持在 −5 至 −10 mV 且无统计学差异,提示颗粒聚集源于 温度诱导的膜结构应力 (如冰晶形成改变脂质排布),而非表面电荷改变。
Figure 2. 三种温度储存 12 个月的粒径( A )与 PDI ( B )变化趋势
Figure 3. 储存前后 mRNA-LNP 的冷冻电镜形貌对比
mRNA浓度( 0.21 mg/mL )与包封率( >97% )在全部储存条件下 12 个月内均保持不变;但 mRNA完整性呈明显温度依赖 : −80 °C 基本不变, −20 °C 缓慢下降、 12 个月仍保持 70% 以上(回归斜率 −0.64/ 月), 5 °C 则快速降至 12 个月时的 约 42%(斜率 −3.00/ 月)。在无菌、避光条件下, LNP内部水相中的水解 被确认为 mRNA降解的主要路径 —— 即便包封率完好, mRNA 的化学不稳定性依然凸显。四种脂质组分浓度均无下降趋势,处方组成保持稳定;质谱 MRM 监测显示, 12 个月后 L301 N-oxide 虽可检出但 低于定量限( 0.2 μg/mL),相对含量不足 L301 的 0.4% ,证实哌啶基饱和结构有效抑制了氧化降解路径。
Figure 4. mRNA浓度( A )、包封率( B )与 mRNA 完整性( C )的 12 个月变化趋势
Figure 5. 四种脂质组分( L301 、 DSPC 、胆固醇、 DMG-PEG 2000 )浓度的 12 个月变化
Figure 6. L301氧化为 N-oxide 的路径及 LC-MS/MS 监测结果
Hep3B细胞实验显示, −20 °C 储存的样品体外蛋白表达在 1 个月后保留约 80% (相对 −80 °C ),此后 12 个月内保持稳定; 5 °C 组则随时间持续下滑, 12 个月时表达下降超过 80% ,与粒径、 PDI及 mRNA 完整性三项指标的恶化高度相关。
Figure 7. 不同储存条件下 mRNA-LNP 的 Hep3B 细胞体外蛋白表达评价
将储存 12个月的样品经静脉注射小鼠( 1 mg/kg mRNA , 24 小时后 ELISA 定量血浆 3N39v4 ),结果显示 三种储存条件之间均无统计学差异 —— 体内活性对理化劣化的敏感度远低于体外。作者分析认为,体内表达主要取决于「可翻译 mRNA 」的可用量: 5 °C 组仍保留约 42% 的完整 mRNA ,加之肝窦内皮细胞、 Kupffer 细胞及脾细胞等对粒径增大颗粒的 补偿性摄取 与蛋白冠效应,共同缓冲了理化变化对功能的影响。这一结果凸显了 mRNA-LNP体内外活性关联的复杂性。
Figure 8. 储存 12 个月后 mRNA-LNP 的小鼠体内蛋白表达评价
综合理化与活性数据,该研究确立了 Z-average粒径、 PDI 与 mRNA 完整性 为与生物活性关联最紧密的三大关键质量指标。从制药工业实践角度: −20 °C 可作为 mRNA-LNP 长达 12 个月的 实用储存条件 (与 −80 °C 等效),有望显著降低超低温冷链依赖; 5 °C 下则建议以 约 3个月 为保守储存期限。此外,缩短 mRNA链长、增强脂质疏水性以限制水分渗入颗粒内部,是进一步提升储存稳定性的潜在方向。
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